图 2.Norgens 血浆/血清无细胞循环 DNA 纯化微型试剂盒用于从 50 µL、100 µL 和 200 µL 的血浆中纯化循环 DNA。然后将 2 μL 纯化 DNA 用作 q 聚合酶链式反应的模板，以评估不同血浆容量中纯化的管家 5S rRNA 基因的线性度。Norgens 血浆/血清无细胞循环 DNA 纯化微型试剂盒能够从 100 µL 血浆中回收 96% 的 5S rRNA 基因，而 50 µL 血浆中的含量仅为 96%。此外，与 100 µL 血浆中的含量相比，从 200 µL 血浆中回收了 97% 的 5S rRNA 基因。

图 3.使用 Norgens 血浆/血清无细胞循环 DNA 纯化微试剂盒从 50 µL、100 µL 和 200 µL 血浆中分离 DNA。在 20 升 q 聚合酶链式反应中使用的洗脱液体积（2、4 和 8 升）不断增加，以观察 Ct 值是否下降。随着模板量的增加，Ct 值也会增加，这清楚地表明样本中存在聚合酶链式反应抑制剂。增加 qPCR 中用作模板的洗脱体积并不会影响 qPCR 生成的 Ct 值，事实上，Ct 值往往会随着聚合酶链式反应输入体积的增加而降低，这表明使用 Norgen 试剂盒从血浆中纯化的 DNA 不含血浆中常见的抑制剂。

图 4.与竞争对手 Q 的试剂盒相比，Norgen 的血浆/血清无细胞循环 DNA 纯化迷你试剂盒用于从 200 µL、300 µL 和 400 µL 的血浆中纯化循环 DNA。然后将 2 μL 纯化 DNA 用作 q 聚合酶链式反应的模板，以评估纯化的管家 5S rRNA 基因的相对含量。5S rRNA 基因的相对含量随样本输入量的增加而线性增加。与其他分离方法相比，Norgen 的试剂盒方法对看家 5S rRNA 基因的回收最稳定，回收率也最高。

图 5.Norgen 血浆/血清无细胞循环 DNA 纯化迷你试剂盒用于从 200 µL、300 µL 和 400 µL 的血浆中纯化循环 DNA。然后将 2 μL 纯化 DNA 用作 q 聚合酶链式反应的模板，以评估不同血浆容量中纯化的管家 5S rRNA 基因的线性度。相对于 200 µL 血浆中的含量，Norgen 的血浆/血清无细胞循环 DNA 纯化迷你试剂盒能够从 300 µL 血浆中回收 98% 的 5S rRNA 基因。此外，与 300 µL 血浆中的含量相比，从 400 µL 血浆中回收了 98% 的 5S rRNA 基因。

图 6.使用 Norgen 血浆/血清无细胞循环 DNA 纯化迷你试剂盒从 200 µL、300 µL 和 400 µL 血浆中分离 DNA。在 20 升 q 聚合酶链式反应中使用的洗脱液体积（2、4 和 8 升）不断增加，以观察 Ct 值是否下降。随着模板量的增加，Ct 值也会增加，这清楚地表明样本中存在聚合酶链式反应抑制剂。qPCR 中用作模板的洗脱体积的增加并不影响 qPCR 生成的 Ct 值，事实上，Ct 值有随着聚合酶链式反应输入体积的增加而降低的趋势，这表明使用 Norgens 试剂盒从血浆中纯化的 DNA 不含血浆中常见的抑制剂。

图 7.从不同体积的血浆中纯化无细胞循环 DNA。与竞争对手 Q 的试剂盒相比，Norgens 血浆/血清无细胞循环 DNA 纯化 Midi 试剂盒用于从 0.5 mL、1 mL、2 mL 和 4 mL 血浆中纯化循环 DNA，这些血浆采用柠檬酸盐作为抗凝剂收集的血液制备而成。然后将 2 μL 纯化 DNA 用作 q 聚合酶链式反应的模板，以评估纯化的管家 5S rRNA 基因的相对含量。5S rRNA 基因的相对含量随样本输入量的增加而线性增加。与其他分离方法相比，Norgen 试剂盒对管家 5S rRNA 基因的回收最稳定，回收率也最高。

图 8.使用 Norgens 血浆/血清无细胞循环 DNA 纯化 Midi 试剂盒从增加的血浆体积中纯化 DNA 的线性度。Norgens 血浆/血清无细胞循环 DNA 纯化 Midi 试剂盒用于纯化 0.5 mL、1 mL、2 mL 和 4 mL 血浆中的循环 DNA，这些血浆采用柠檬酸盐作为抗凝剂收集的血液制备而成。然后将 2 μL 纯化 DNA 用作 q 聚合酶链式反应的模板，以评估不同血浆容量中纯化的管家 5S rRNA 基因的线性度。Norgens 血浆/血清无细胞循环 DNA 纯化 Midi 试剂盒能够从 1 mL 血浆中回收 97% 的 5S rRNA 基因，而 0.5 mL 血浆中的回收率仅为 97%。此外，相对于 1 mL 血浆中的含量，从 2 mL 血浆中可回收 95% 的 5S rRNA 基因。此外，与 2 mL 血浆中的含量相比，从 4 mL 血浆中回收了 95% 的 5S rRNA 基因。

图 9.在检测人类 5S 基因时，确定无血浆细胞循环 DNA 样本中的抑制量。使用 Norgens 血浆/血清无细胞循环 DNA 纯化 Midi 试剂盒从 0.5 mL、1 mL、2 mL 和 4 mL 血浆中分离 DNA。在 20 µL q 聚合酶链式反应中使用的洗脱液体积不断增加（2、4 和 8 µL），以观察 Ct 值是否下降。随着模板量的增加，Ct 值也会增加，这清楚地表明样本中存在聚合酶链式反应抑制剂。增加 qPCR 中用作模板的洗脱体积并不会影响 qPCR 生成的 Ct 值，事实上，Ct 值有随着聚合酶链式反应输入体积的增加而降低的趋势，这表明使用 Norgens 试剂盒从血浆中纯化的 DNA 不含通常存在于血浆中的常见抑制剂。

图 10.与竞争对手 Q 的试剂盒相比，Norgen 的血浆/血清无细胞循环 DNA 纯化 Maxi 试剂盒用于从 5 mL、8 mL 和 10 mL 的血浆中纯化循环 DNA，这些血浆是用柠檬酸盐作为抗凝剂采集的。然后将两毫升纯化 DNA 用作 q 聚合酶链式反应的模板，以评估纯化的管家 5S rRNA 基因的相对含量。5S rRNA 基因的相对含量随样本输入量的增加而线性增加。与其他分离方法相比，Norgen 的试剂盒对管家 5S rRNA 基因的回收最稳定，回收率也最高。

图 11.Norgens 血浆/血清无细胞循环 DNA 纯化 Maxi 试剂盒用于纯化 5 mL、8 mL 和 10 mL 血液中的循环 DNA。然后将两毫升纯化 DNA 用作 q 聚合酶链式反应的模板，以评估不同血浆容量中纯化的管家 5S rRNA 基因的线性度。Norgens 血浆/血清无细胞循环 DNA 纯化 Maxi 试剂盒能够从 8 mL 血浆中回收 94% 的 5S rRNA 基因，而 5 mL 血浆中的含量仅为 94%。此外，相对于 10 mL 血浆中的含量，从 10 mL 血浆中回收了 96% 的 5S rRNA 基因。

图 12.使用Norgens 血浆/血清无细胞循环 DNA 纯化 Maxi 试剂盒从 5 mL、8 mL 和 10 mL 血浆中分离 DNA。在 20 µL q 聚合酶链式反应中使用的洗脱液体积不断增加（2、4 和 8 µL），以观察 Ct 值是否下降。随着模板量的增加，Ct 值也会增加，这清楚地表明样本中存在聚合酶链式反应抑制剂。qPCR 中用作模板的洗脱体积的增加并不影响 qPCR 生成的 Ct 值，事实上，Ct 值有随着聚合酶链式反应输入体积的增加而降低的趋势，这表明使用 Norgens 试剂盒从血浆中纯化的 DNA 不含血浆中常见的抑制剂。